Biotenside

Inhaltsverzeichnis

1 Einleitung.- 1.1 Definition von Tensiden.- 1.2 Chemisch synthetisierte Tenside.- 1.3 Einsatzgebiete chemisch synthetisierter Tenside.- 1.4 Biotenside der höheren Zelle.- 1.5 Schwerpunkte des vorliegenden Buches.- 2 Mikrobielle Biotenside.- 2.1 Biotechnologische Aspekte.- 2.2 Surfactin und Emulsan.- 3 Grundlagen der Mikrobiellen Glycolipidbildung.- 3.1 Screening.- 3.2 Tensid-Test.- 3.3 Allgemeines zur mikrobiellen Kultivierung.- 3.4 Isolierung, Strukturaufklärung und quantitative Produktbestimmung.- 3.5 Biosynthese der Precursormoleküle.- 3.5.1 Biosynthese von Fettsäuren aus Glucose.- 3.5.2 Biosynthese von Fettsäuren aus n-Alkanen.- 3.5.3 Biosynthese des Kohlenhydratanteils.- 3.6 Regulatorische Mechanismen bei der Biotensidsynthese.- 3.7 Physiologische Rolle von Biotensiden.- 4 Glycolipide aus Biotechnologischen Prozessen.- 4.1 Trehalose- und andere mycolsäurehaltige Glycolipide.- 4.1.1 Mikrobielle Produzenten und Molekülstrukturen.- 4.1.2 Biosynthese-Studien.- 4.1.3 Mikrobielle Produktion.- 4.1.3.1 Nichtionische Trehaloselipide.- 4.1.3.2 Nichtionische Glucose-, Fructose- und Saccharoseiipide.- 4.1.3.3 Anionische Trehaloselipide.- 4.1.3.4 Biotransformationen (Transfer von Corynomycolsäuren).- 4.1.4 Chemische Synthese.- 4.1.5 ?,?'-D-Trehalose.- 4.1.6 Physiko-chemische Eigenschaften.- 4.1.6.1 Corynomycolsäuren.- 4.1.6.2 Zucker-corynomycolate und Acyl-Trehalosen.- 4.1.6.3 Anionische Trehaloselipide.- 4.2 Lipooligosaccharide.- 4.2.1 Übersicht über mikrobielle Produzenten und Molekülstrukturen.- 4.2.2 Lipopentaglucose bei Nocardia corynebacteroides.- 4.2.2.1 Mikrobieller Produzent und Molekülstruktur.- 4.2.2.2 Mikrobielle Bildung.- 4.2.2.3 Regulation.- 4.2.2.4 Tensideigenschaften.- 4.2.3 Lipooligosaccharide bei Tsukamurella sp. nov..- 4.2.3.1 Mikrobieller Produzent.- 4.2.3.2 Molekülstrukturen.- 4.2.3.3 Mikrobielle Produktion.- 4.2.3.4 Tensideigenschaften.- 4.3 Rhamnoselipide.- 4.3.1 Mikrobielle Produzenten und Molekülstrukturen.- 4.3.2 Physiologische Rolle der Rhamnoselipide.- 4.3.3 Biosynthese von Rhamnoselipiden.- 4.3.4 Regulation der mikrobiellen Rhamnoselipidbildung.- 4.3.5 Genetik der Rhamnoselipid-Synthese.- 4.3.6 Mikrobielle Produktion der Rhamnoselipide.- 4.3.6.1 Batch bzw. Fed-Batch Kultivierung unter wachstumslimitierten Bedingungen.- 4.3.6.2 Batch-Kultivierung mit ruhenden freien Zellen.- 4.3.6.3 Semi-kontinuierliche Rhamnoselipid-Produktion mit immobilisierten Zellen.- 4.3.6.4 Kontinuierliche Kultivierung und Produktion mit freien Zellen.- 4.3.7 Chemische Synthese.- 4.3.8 L-Rhamnose und optisch-aktive 3-Hydroxydecansäure.- 4.3.9 Physiko-chemische Eigenschaften.- 4.4 3-Hydroxyfettsäure-haltige Glucoselipide.- 4.4.1 Aminolipide und Glucoselipide bei Serratia sp..- 4.4.2 Glucoselipide bei Alcanivorax borkumensis MM1.- 4.4.2.1 Mikrobieller Produzent und Molekülstruktur.- 4.4.2.2 Biosynthese des Glucoselipids.- 4.4.2.3 Mikrobielle Kultivierung.- 4.4.2.4 Physiko-chemische Eigenschaften.- 4.5 Sophoroselipide bei Candida sp. (früher: Torulopsis sp.).- 4.5.1 Mikrobieller Produzent und Molekülstrukturen.- 4.5.2 Biosynthese und Regulation.- 4.5.3 Mikrobielle Produktion von Sophoroselipiden aus natürlichen C-Quellen.- 4.5.3.1 Batch-, Fed-Batch-Fermentationen und Verfahren mit ruhenden Zellen.- 4.5.3.2 Self-cycling-Fermentation.- 4.5.3.3 Kontinuierliche Sophoroselipid-Produktion.- 4.5.3.4 Gewinnung neuer Sophoroselipide durch biotechnologische Maßnahmen.- 4.5.4 Oberflächenaktive Eigenschaften von nativen Sophoroselipiden.- 4.5.5 Modifizierung nativer Sophoroselipide.- 4.5.6 Sophorose und optisch-aktive Fettsäuren.- 4.6 Cellobiose-und Mannosyl-erythritollipide.- 4.6.1 Ustilago sp.: Cellobiose- und Mannosyl-erythritollipide.- 4.6.2 Mannosyl-erythritollipide bei anderen Gattungen.- 4.6.3 Untersuchungen mit Ustilago maydis ATCC 14826 und Ustilago maydis DSM 4500.- 4.6.3.1 Mikrobielle Produktion mit Ustilago maydis ATCC 14826 und DSM 4500.- 4.6.4 Grenzflächenaktive Eigenschaften der Cellobiose- und Mannosyl-eryt

Portrait

Dr. Siegmund Lang, TU Braunschweig
Dr. Wolfram Trowitzsch-Kienast, TFH Berlin